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从神经到类器官:N2与B27的应用场景全解析

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2026-07-28

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在神经细胞培养中,血清的使用一直是一个两难的问题。血清确实提供了细胞生长所需的多种营养因子,但其成分复杂、批次间差异大,且可能诱导细胞非预期分化。如何在提供充足营养支持的同时,保持培养体系的可控性和可重复性?N2B27两款经典的无血清添加剂,为这一问题提供了成熟的解决方案。

如今,这两款添加剂的应用范围已远远超出神经细胞培养的范畴,广泛覆盖了神经、上皮、肿瘤模型以及类器官系统等。

一、来源与设计初衷

N2添加剂最初由Jane Bottenstein于上世纪80年代开发,其设计目的是在无血清条件下支持神经母细胞瘤细胞系的生长。配方基于Bottenstein‘s N-1 formulation优化而来。N2添加剂以100X浓缩液形式提供。

图1. N-2与NSC-27 (等同于B27)无血清添加剂

B27添加剂则是由Gregory Brewer等人为原代胚胎神经元的培养专门设计的。B27添加剂以50X浓缩液形式提供。自1993年首次报道以来,B27已在神经科学领域积累了超过三十年的应用历史

两者最根本的区别在于:N2源于肿瘤细胞系培养,B27源于原代神经元培养。这一设计初衷的差异,直接决定了两者在配方和应用场景上的不同侧重。

二、应用场景
N2添加剂主要应用于:
  • 神经干细胞和神经祖细胞的扩增

  • 中枢神经系统(CNS)与周围神经系统(PNS)来源的神经元培养

  • 神经母细胞瘤细胞系(如SH-SY5Y)的培养

  • 多能干细胞的神经定向分化

  • 类器官来源神经元的培养

B27添加剂主要应用于:
  • 原代海马神经元和皮层神经元的长期培养与功能维持

  • 神经干细胞的维持与扩增

  • 神经祖细胞的培养

  • 脑类器官的培养

近年来B27和N2的应用已从神经细胞培养大幅拓展至类器官与肿瘤类器官领域。在胃癌、肝癌、乳腺癌、小肠、结肠、胰腺、肺、视网膜、肝脏等多种组织来源的类器官构建中,B27和N2已成为培养基配方的核心组分。在肝细胞癌类器官培养中,B27和N2可提供维持细胞存活与干性所必需的基础营养成分,为细胞的生长提供营养支持。

图2:正常人体组织的类器官模型补充成分及培养时间

三、如何选择?

考量维度

N2添加剂

B27添加剂

原始设计用途

神经母细胞瘤细胞系

原代胚胎神经元

配方复杂度

相对简单

更丰富

核心功能

促进增殖,维持未分化状态

支持长期存活与功能成熟

推荐细胞类型

神经干细胞/祖细胞、神经瘤细胞系

原代神经元、海马/皮层神经元

推荐培养周期

短期扩增

长期培养(>14天)

标准工作浓度

1%(100X稀释)

2%(50X稀释)

类器官应用

神经类器官、肿瘤类器官等

多种组织类器官(肝、胃、肠、乳腺等)

图1. N-2与NSC-27 (等同于B27)无血清添加剂

在神经细胞培养中,常采用序贯策略:增殖阶段使用N2,分化阶段切换至B27。在类器官培养中,两者常联合使用,例如胃癌类器官培养基中同时添加1×B27和1×N2。此外,B27还有多种配方变异可供选择——不含维生素A的B27版本(B27 without Vitamin A),因视黄酸可能诱导神经干细胞向神经细胞分化,对于需要维持神经干细胞未分化状态的研究,应选用该版本。

图3:小鼠小肠类器官(左)与肝癌类器官(右)

四、操作要点

N2(100X):1:100加入基础培养基(DMEM/F12或Neurobasal)。

B27(50X):1:50加入Neurobasal培养基,终浓度2%(v/v)。

01
注意事项

添加剂应避免反复冻融,分装后-20℃避光保存;完全培养基2-8℃避光保存约2周;全程无菌操作。

02
参考文献:

Fujii, M., Sato, T. Somatic cell-derived organoids as prototypes of human epithelial tissues and diseases. Nat. Mater. 20, 156–169 (2021). https://doi.org/10.1038/s41563-020-0754-0

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