本试剂盒包含重组人IL-6、人IL-23、人TGF-β1和人IL-1β，用于将纯化的人初始CD4+ T细胞分化为Th17细胞。
IL-6：关键促炎因子，使用浓度范围 10-50 ng/mL；
IL-23：维持和稳定Th17表型，浓度 10-50 ng/mL；
TGF-β1：关键调节因子，浓度范围 1-10 ng/mL；
IL-1β：强效促Th17因子，浓度 10-50 ng/mL。
产品组分
| 组分编号 | 组分名称 | 92651ES05 | 92651ES10 | 数量 |
| 92651ES-A | Human IL-6 Protein | 5 μg | 20 μg | 1 |
| 92651ES-B | Human IL-23 Protein | 2 μg | 10 μg | 1 |
| 92651ES-C | Human TGF-β1 Protein | 2 μg | 10 μg | 1 |
| 92651ES-D | Human IL-1β Protein | 2 μg | 10 μg | 1 |
产品包含
| 组分原货号 | 产品名称 | 来源 | 外观 |
| 90107ES | Recombinant Human IL-6 Protein | E.coli | 冻干粉 |
| 90225ES | Recombinant Human IL-23 Protein | HEK293 | 液体 |
| 91701ES | Recombinant Human TGF-β1 Protein | HEK293 | 液体 |
| 90101ES | Recombinant Human IL-1β Protein | E.coli | 冻干粉 |
复溶方法
| 组分名称 | 复溶方法 |
| Human IL-6 Protein | 开盖之前，先离心。使用蒸馏水复溶冻干的蛋白质，复溶浓度超过100 μg/mL。建议首次使用时将蛋白分装为每次实验用量，避免反复冻融。 |
| Human IL-1β Protein |
人Th17极化套装操作流程
(仅供参考，最佳因子使用浓度和步骤请参考相关文献，根据具体实验条件和实验目的优化。
1、包被anti-human CD3 mAb以激活T细胞
1.1 使用无菌PBS将anti-human CD3 mAb稀释至工作浓度（5 µg/mL）。
1.2 将稀释后的anti-human CD3 mAb按每孔1mL加入24孔细胞培养板中包被，在37°C条件下孵育2小时，或在4°C下孵育过夜。
2、接种细胞并启动Th17极化
2.1 次日，吸弃孔内包被液，用预冷的无菌PBS轻柔洗涤孔板2-3次，以去除未结合的抗体。
2.2 将CD4⁺ T细胞分选试剂分选获得的初始CD4+ T细胞，以1*10^6 cells/mL的浓度重悬于Th17极化完全培养基中。
Th17极化完全培养基配方：RPMI-1640基础培养基，补充10% FBS、55 μM β-巯基乙醇、30ng/mL重组人IL-6、20 ng/mL重组人IL-23、20ng/mL重组人IL-1β、10ng/mL重组人TGF-β1、10 μg/mL anti-human IL-4功能性抗体、10 μg/mL anti-human IFN-γ功能性抗体及1 μg/mL anti-human CD28 mAb。
2.3 取1mL细胞悬液接种至已包被的24孔板中。置于37°C、5% CO₂的细胞培养箱中培养。
3、培养维持与细胞扩增
3.1 培养48小时后，轻柔吹打并收集细胞悬液，300 ×g离心5分钟。
3.2 弃上清，用新鲜的Th17极化完全培养基将细胞重悬，并将细胞密度调整至 3×10^5 cells/mL，重新接种至新孔板中继续培养。
3.3 此后，每12小时在倒置显微镜下观察细胞密度及状态。若细胞密度过高（例如 >2×106 cells/mL），则进行半量换液或按适当比例将细胞分至新的孔中，并补充新鲜Th17极化完全培养基（不用加anti-human CD28 mAb）以维持细胞最佳生长状态。
4、细胞再刺激与胞内因子捕获
培养至第5天，收集细胞，用预冷的PBS洗涤一次后，使用含 10 ng/mL PMA、1 µg/mL Ionomycin及10 µg/mL Brefeldin A 的RPMI-1640完全培养基重悬细胞，调整密度至 1×10^6cells/mL，于37°C、5% CO₂培养箱中避光共刺激孵育5小时。
5. 阴性对照组（Th0）设置
为评估极化的特异性，平行设置Th0阴性对照组。其流程与上述Th17诱导组基本相同，主要区别在于所使用的培养基不同：
5.1、Th0维持培养基配方：RPMI-1640基础培养基，补充10 % FBS，55 μM β-巯基乙醇，10μg/mL Anti-human IL-4，10μg/mL Anti-Human IFN-γ，40ng/mL IL-2及1 µg/mL anti-human CD28 mAb。
5.2、不添加极化细胞因子：该培养基中不添加极化细胞因子。
除上述差异外，细胞接种、换液、密度监控均与Th17诱导组相同。
流式细胞术检测
1. 收集细胞：细胞诱导后，弃培养基上清，用PBS清洗细胞1遍，弃上清，再将贴壁细胞用PBS轻轻吹打重悬；
2. 计数：用细胞计数仪计数并计算细胞总数，300×g，离心5min，弃上清；
3. 死活染料染色：按照100μL/1e6浓度加入稀释好的死活染料Fixable Viability Dye 452 (稀释方法参考说明书）;
4. 洗涤细胞：用PBS洗涤细胞，300×g，离心5min，去除残留的死活染料；
5. 细胞固定：用PBS将细胞按照1e7/ml重悬，100μL/孔加至96孔板，300×g，离心5min，弃上清；每孔加入200μL 4% PFA，室温避光放置15min;
6. 洗涤细胞：300×g，离心5min，弃上清；每孔加200μLPBS，300×g，离心5min洗涤细胞，去除残留的固定剂；
7. 细胞破膜：每孔加入200μl fixation/permeabilization solution（BD 554714），4~8℃冰箱孵育30min；
8. 细胞封闭：每孔加入100μL 1×BD Perm/Wash™ Buffer，并加入Human IgG进行细胞封闭（步骤7与步骤8可同时进行），随后300×g，离心5min，弃上清；
9. 孵育抗体：每孔加入100μL 1×BD Perm/Wash™ Buffer并加入孵育抗体IL-17A Monoclonal Antibody (eBio64DEC17), PE-Cyanine7（Thermo 25-7179-42）(抗体用量参考说明书）;
10. 洗涤细胞：300×g，离心5min，弃上清；每孔加200μl PBS，300×g，离心5min洗涤细胞，去除残留抗体，随后用100μL-200μL重悬细胞；
11. 上机检测。
高活性、高纯度、高稳定性、低内毒素
-85 ~ -65℃保存，收到货之日起，有效期1年。
复溶后， 无菌条件下，-85 ~ -65℃保存，3个月有效期。
